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艾克发学术 | Cancer Research重磅成果:肠癌免疫治疗进入"预测+干预"双时代!

发布时间:2025.03.07

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免疫亚型分型系统赋能
结直肠癌免疫治疗精准预测与增效策略的开发


结直肠癌(CRC)是全球癌症相关死亡的第二大原因。尽管早期发现和治疗取得了进展,但晚期CRC的预后仍然不佳,这强调了迫切需要新的治疗策略。近年来,免疫疗法,尤其是针对PD-1/PD-L1和CTLA-4的免疫检查点抑制剂,已成为一种有希望的CRC治疗方法。这些疗法在高微卫星不稳定性(MSI-H)或错配修复缺陷(dMMR)型患者亚群中显示出可观的临床益处。然而,大多数CRC患者以微卫星稳定性(MSS)为特征,对免疫治疗的反应有限,因此需要改进预测方法和新策略来提高免疫治疗在更广泛的CRC患者群体中的有效性。如何精准预测免疫治疗响应并开发增效策略,是当前研究的关键挑战。

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2025年1月29日,中国人民解放军总医院第一医学中心 董光龙教授、杜晓辉教授等人在美国医学-肿瘤学类旗舰期刊Cancer Research(IF=12.5)发表题为“An Immune Subtype Classification System Enables the Development of Strategies to Predict and Enhance Immunotherapy Responses in Colorectal Cancer”的研究论文[1]。该研究基于多种免疫细胞和通路开发了一种免疫亚型分类系统,通过基于免疫亚型的机器学习构建的模型能够准确预测CRC患者对免疫治疗的敏感性,并筛选出新型IGF1R抑制剂AG-538作为增强抗肿瘤免疫的强效剂。本研究将有助于预测CRC患者对免疫治疗的反应,为开发新的化学免疫治疗策略铺平道路。



文章解析

1.基于免疫特征的CRC免疫亚型的鉴定与验证

为了构建CRC患者的免疫亚型,研究团队收集了来自TCGA和GEO数据库的公共数据,包括临床信息和RNA-seq数据。通过单样本基因集富集分析(ssGSEA)和分层聚类,将CRC患者分为高、中、低免疫浸润亚型(Cluster 3/2/1)。其中高浸润亚型(Cluster 3)富集CD8+ T细胞、NK细胞和M1巨噬细胞,MSI-H比例高,提示免疫治疗敏感性;而中浸润亚型(Cluster 2)预后最佳,可能与免疫抑制性微环境动态平衡有关。

图1. 基于免疫特征的CRC免疫亚型的鉴定与验证(源自论文[1])

2.基于机器学习模型预测CRC患者免疫治疗敏感性

鉴于三种亚型的不同免疫特性,研究团队探索了开发预测模型的潜力,基于其准确的表达谱确定个体对免疫治疗的敏感性。
以TCGA-CRC数据集作为训练参考,将数据按7:3的比例随机划分为训练集和内部验证集,外部验证集包括dgse143985、GSE13067和GSE4554,最大限度地减少了组织样本中的批处理效应。通过整合RF和LDA算法建立了最优模型,平均AUC最高(0.962),且在所有验证数据集中处于领先。进一步分析集中在13个关键基因(如CCL5、SLAMF7)构建的模型,可精准预测患者对免疫治疗的反应。根据中位数将所有CRC患者分为高免疫评分组和低免疫评分组。在无免疫治疗组中,微卫星不稳定性(MSI)和共识分子亚型(CMS分析显示,高分组中MSl和CMS1患者的比例更高。在免疫治疗组中,高分组中CMS1患者的比例更高,免疫应答患者的免疫评分明显高于无应答患者。这些结果表明,该预测模型在评估CRC患者对免疫治疗的敏感性方面具有很高的准确性和可靠性。
图2. 基于机器学习模型预测CRC患者免疫治疗敏感性(源自论文[1])

3.使用内部队列和临床标本验证预测模型

为了进一步验证该模型在实际应用中的性能,研究团队收集了45例患者的标本,同时进行转录组测序和类器官培养。根据13个关键基因的表达谱,这些患者被分为高评分组和低评分组。研究者采用多重免疫组化(mIHC)检测临床样本中CD8+T细胞、PD-1/PD-L1表达及Foxp3+Treg细胞分布,在高评分组中CD8+T和CD56+NK细胞显著增加,两者都与肿瘤杀伤有关;免疫检查点PD-1和PD-L1的高表达水平表明高评分组患者将从免疫治疗中获益更多。为了评估CRC患者对PD-1抗体的反应性,研究团队又构建了具有天然肿瘤浸润性免疫细胞的患者来源的类器官(PDOs),并用Nivolumab治疗。Ki67免疫荧光染色结果显示,抗PD-1治疗后,高评分类器官的增殖能力明显受损,有效抑制了肿瘤的生长。因此,来自临床样本的验证结果证实了该模型的高准确性和可靠性。

图3. 使用内部队列和临床标本验证预测模型(源自论文[1])

4.基于免疫亚型的药物筛选确定I-OMe-AG-538是增强抗肿瘤免疫的潜在药物

疫亚型分析显示了区分个体对免疫治疗敏感性的强大能力。为了进一步将免疫治疗的益处扩展到更多的CRC患者,基于高(Cluster 3)和低(Cluster 1)免疫浸润组之间前100个最显著的上调和下调基因来识别可能增强抗肿瘤免疫的潜在药物。PBMCs和肿瘤细胞的体外共培养实验显示,与其他药物相比,AG-538增强PBMCs介导的肿瘤细胞杀伤效果最为显著。进一步研究表明,AG-538通过调节趋化因子表达激活抗肿瘤免疫应答,显著提高CCL5和CXCL10水平。随后的实验结果表明,AG-538增强了两种细胞对抗PD-1治疗的敏感性,并有效促进了细胞活化相关细胞因子lFN-γ、GzmB和TNF-α的分泌,但AG-538的作用依赖于抑制IGF1R。此外,体外实验结果表明AG-538预处理的CRC细胞仍然表现出更大的肿瘤易感性,而AG-538预处理的PBMC对CRC细胞并没有产生更强的细胞毒性作用,这表明AG-538主要通过对肿瘤细胞的作用间接激活抗肿瘤免疫,而不是直接作用于免疫细胞。

图4.基于免疫亚型的药物筛选确定I-OMe-AG-538是增强抗肿瘤免疫的潜在药物(源自论文[1])

5.I-OMe-AG-538增强体内的抗肿瘤免疫反应

研究团队进一步评估了AG-538对体内抗肿瘤免疫的作用,免疫缺陷裸鼠实验表明AG-538对肿瘤生长的影响很小,而AG-538在免疫正常的C57BL/6J小鼠中显著抑制肿瘤生长,表明其肿瘤抑制作用是免疫系统依赖性的。此外,MSI MC38或MSS ct26衍生异体移植物单独或联合抗PD-1抗体治疗,AG-538单独治疗部分抑制肿瘤生长,而与抗PD-1联合治疗对肿瘤生长的抑制作用更大,表明AG-538和PD-1在增强抗肿瘤免疫方面具有协同作用。通过流式细胞术和mIHC多种方法评估AG-538对肿瘤微环境(TME和肿瘤淋巴细胞浸润的影响,其中mIHC结果显示AG-538处理后CD8+和GzmB+T细胞增加,Foxp3+Treg细胞减少。这些发现表明AG-538增强了肿瘤组织中细胞毒性T淋巴细胞(CTLs)的浸润和活性

图5.I-OMe-AG-538增强体内的抗肿瘤免疫反应(源自论文[1])

6.AG-538诱导活性氧(ROS)依赖的DNA损伤,下调多修复基因的表

受损的DNA是诱导抗肿瘤免疫的重要因素。为了探究AG-538作为IGF1R抑制是否与DNA损伤有关,研究团队检测了AG-538处理后的DNA损伤生物标志物γH2AX和53BP1。结果表明,AG-538显著增强细胞DNA损伤水平。此外,敲除IGF1R也增加了DNA损伤的程度,但AG-538未能进一步加剧IGF1R敲除细胞的DNA损伤。qPCR结果等多种分子实验和蛋白实验结果表明,AG-538不仅通过产生ROS诱导DNA损伤,而且通过抑制多修复基因的表达加重DNA损伤。

图6.AG-538诱导ROS依赖的DNA损伤,下调多修复基因的表达(源自论文[1])
7.AG-538促进cGAS-STING通路的激活和下游细胞因子的释放
受损的DNA可以增加细胞质游离DNA或微核的水平,这些水平在被cGAS感知后,激活STlNG/I型IFN信号通路,增强抗肿瘤免疫。研究团队继续一系列实验来探索AG-538处理后该通路是否被激活。WB、qPCR和ELISA结果综合表明,AG-538诱导的DNA损伤激活了肿瘤细胞中的cGAS/STING/I型IFN通路,从而促进了抗肿瘤免疫反应。
图7.AG-538促进cGAS-STING通路的激活和下游细胞因子的释放(源自论文[1])
8.需要cGAS/STING通路介导AG-538与抗PD-1联合抗肿瘤免疫反应

为了进一步评价AG-538的抗肿瘤免疫作用是否依赖于cGAS/STING通路,研究团队进行了体内和体外实验。PBMC共培养实验及MC38小鼠肿瘤模型敲除实验均证实STlNG低表达及不表达都明显损害了AG-538的治疗效果,表明AG-538诱导的抗肿瘤免疫依赖于肿瘤固有的cGAS-STING激活;流式细胞术和IHC结果均显示在STING抑制或敲除的小鼠MC38同种异体移植物中,AG-538未能诱导lFN-γ+CD8+T细胞、GzmB+CD8+T细胞的浸润增加。这些结果共同表明AG-538激活了TME的内在免疫反应,促进了免疫细胞的浸润和活化,为CRC患者免疫治疗的有效性提高提供了新的理论依据。

为进一步探讨IGF1R通路在CRC免疫治疗中的临床意义,研究团队对20例接受免疫治疗的CRC患者的标本及其临床特征信息进行分析。发现在plGF1R低表达组中应答者的百分比更高,并且应答者的plGF1R低于无应答者,且plGF1R低表达组预后明显优于高表达的患者。为了进一步探索上述免疫评分与IGF1R通路激活之间的关系,将内部标本分为高评分组和低评分组,lHC结果显示高评分组plGF1R的表达较低。对AG-538处理的CRC细胞检测13个关键基因的表达,在Z-score归一化后,计算免疫评分,发现AG-538治疗后这些评分显著升高。这些发现不仅强调了预测模型的稳健性,而且证实了AG-538抑制plGF1R在引发抗肿瘤免疫应答中的有效性。

图8.cGAS/STING通路介导AG-538与抗PD-1联合抗肿瘤免疫反应(源自论文[1])



本研究中涉及的mIHC实验(Panel:CD8CD68CD56PD-1PD-L1PANCKDAPI)利用艾克发生物XTSA®染料及相关试剂直观检测到高/低免疫评分患者的细胞亚群分布情况,凸显了mIHC在TME分析中的独特优势。

Panel:CD8、CD68、CD56、PD-1、PD-L1、PANCK、DAPI

总结

本研究通过整合多组学数据与机器学习算法,构建了基于免疫亚型的预测模型,为CRC患者分层治疗提供了新工具;筛选出的新型IGF1R抑制剂AG-538,可显著增强抗肿瘤免疫反应,并突显了AG-538与抗PD-1抗体联合使用的潜力,作为一种化疗免疫治疗策略,这为个性化治疗铺平了道路。


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参考文献

[1]Li D, Liu X, Gao W, et al. An Immune Subtype Classification System Enables the Development of Strategies to Predict and Enhance Immunotherapy Responses in Colorectal Cancer. Cancer Res. Published online January 29, 2025. doi:10.1158/0008-5472.CAN-24-2464.

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